1.引物是如何合成的？

目前引物合成基本采用固相亚磷酰胺三酯法。DNA合成仪有很多种,无论采用什么机器合成，合成的原理都相同，主要差别在于合成产率的高低，试剂消耗量的不同和单个循环用时的多少。（1） 去保护：加入Deblocking脱去碱基上5'- OH的保护基团 DMT ，获得游离的 5'- OH；

（2） 耦合：同时加入活化剂和新的碱基，新的碱基 5'- OH仍然被 DMT 保护，3' 端被活化与溶液中游离的 5'- OH发生耦合反应；

（3） 封闭：耦合反应中极少数 5'- OH没有参加反应 ，用封闭试剂终止其后继续发生反应；

（4） 氧化：加入氧化剂使其由核苷亚磷酸酯形成更稳定的核苷磷酸酯。

合成后处理：

切割与脱保护基：将合成好的寡核苷酸链从支持物上化学切割下来。常用新鲜的浓氨水来裂解CPG与初始核苷之间的酯键。断裂下来的寡核苷酸带有自由的3’羟基。

纯化：根据所合成寡核苷酸的组成和应用来选定纯化的方法。常用的纯化方法有：C18、OPC、PAGE和HPLC。

定量：根据寡核苷酸在260nm处的紫外吸收来定量。

储存：分装抽干。

2.引物纯化方式有哪些，如何选择？

◆　C18柱脱盐：又称简易反相柱，它对DNA有特异性的吸附，可以被有机溶剂溶解洗脱，但不会被水洗脱，所以能有效地去除盐分。它不能有效去除比目的片段短的小片段。实际上，它是一种脱盐的作用。这种方法一般不会对普通PCR反应产生影响。对于需要用于测序、克隆的引物不能使用这个级别。   

◆　OPC纯化： OPC纯化是根据DNA保护基（DMT基）和树脂间的亲合力作用的原理进行纯化目的DNA片段。OPC法纯化的DNA纯度大于95%。适用于45base以下引物的纯化。

◆　PAGE纯：   PAGE纯化法是使用变性聚丙烯酰胺凝胶电泳，对DNA片段进行分离，然后从凝胶中回收目的DNA的方法。PAGE纯化法也是一种非常有效的DNA纯化方法，纯化后的DNA纯度大于95%，对长链Oligo DNA (大于45mer)的纯化特别有效。

◆　HPLC纯化：HPLC纯化是使用高效液相色谱的原理，对DNA片段进行纯化。纯度可以大于99%。主要用于短链和修饰引物的纯化。该法的弱点是成本较高，批量生产效率不高。

◆　F-PAGE纯化：利用高分子惰性聚合分子作为合成载体，合成缩合率较高，有效减少了失败条带。经过后续的脱盐实验，能够去除铵盐等杂质，适用于大部分实验要求。F-Page纯化具有合成效率及纯度高，合成时间更短等显著特点。

3.合成的引物5’端是否有磷酸化？

合成的引物5’为羟基，没有磷酸基团。如果需要您可以用多核苷酸激酶进行5’端磷酸化，或者要求我们合成时直接在5’或3’端进行磷酸化，需要另外收费。

4.需要什么级别的引物？

答：根据实验需要，确定订购引物的纯度级别。

5.需要合成多少OD数？

答：根据实验目的确定。一般PCR扩增，2 OD引物，可以做200-500次50ul标准PCR反应。如果是做基因拼接或退火后做连接，1 OD就足够了。

6.如何计算引物的浓度？

答：引物保存在高浓度的状况下比较稳定。一般情况下，我们建议将引物的浓度配制成100pmol/ul，称为保存浓度，而引物的工作浓度一般配制成10-50pmol/ul。加水的体积（微升）可直接参照合成报告单上推荐的体积，也可按下列方式计算：

      V (微升)= OD数x 33 x 10000 /引物的分子量

引物的分子量可以从合成报告单上获得。注意：1 OD₂₆₀= 33 ug/ml。

溶解前您需要核对合成报告单和引物标签上的引物OD数是否一致。如果不一致，请和我们联系。我们可以根据生产记录查到实际产量是多少。

7.如何计算引物的Tm值？

答：引物设计软件都可以给出Tm，与引物长度、碱基组成及所使用缓冲夜的离子强度有关。

长度为25base以下的引物，Tm计算公式为：Tm = 4℃(G + C)+ 2℃(A + T)

对于更长的寡聚核苷酸，Tm计算公式为：

Tm = 81.5 + 16.6 x Log10[Na+] + 0.41 (GC%) – 600/size＊         

＊公式中，Size = 引物长度。

8.引物（含修饰）的分子量是如何确定的？

答：非修饰的引物的分子量（MW）在随引物提供的报告单上可以找到。如果需要估计一个引物的分子量按每个碱基的平均分子量为324.5，引物的分子量=碱基数 x 碱基的平均分子量，或按下列公式计算MW= (NA * WA) + (NC * WC) + (NG * WG) + (NT * WT) +(Nmod * Wmod) ＋(Nx * Wx)+( NI* WI) +16* Ns–62.

NA, NG, NC, NT, NI分别为引物中碱基A或G或C或T或I的数量，WA, WG ,WC, WT, WI分别为引物中碱基A或G或C或T或I的分子量，Nmod，Wmod 分别为修饰基团的数目和分子量。对于混合碱基的分子量为混合碱基的分子量总合除以混合数，例如G+A混合的分子量为（313.21+329.21）/2 = 321.21。Ns为硫代数目，硫代每个位置增加分子量16。

常规碱基分子量

常规修饰基团分子量

9.如何溶解引物？

答：干燥后的引物质地非常疏松，开盖前**瞬时离心一下，或管垂直向上在桌面上敲敲，将引物粉末收集到管底。根据计算出的体积加入去离子无菌水或TE(pH8.0)缓冲液，室温放置几分钟，振荡助溶，离心将溶液收集到管底。溶解引物用的水一般不要用蒸馏水，因为有些蒸馏水的pH值比较低（pH4-5）,引物在这种条件下不稳定。

10.如何保存引物？

答：引物合成后，经过一系列处理和纯化步骤，旋转干燥而成无色或白色絮状干粉。

干粉：运输时常温运输，-20℃可以保存一年。

储存液：配好后分装成几管，避免反复冻融，-20℃可以保存半年。

工作液：常规使用，4℃保存，也可-20℃保存，但应避免反复冻融。

修饰荧光引物：需要避光保存，尽快使用为宜。

11.引物定量不准是怎么回事儿？

答：我们偶尔收到用户投诉定量不准的报告，出现这种情况的可能性有：

（1）定量错误、分装错误、引物抽干或收样过程中意外丢失。这种可能性有，但是很少，因为作为专业的引物合成公司，我们的生产人员都是经过严格的专业培训，这种错误是要求谨慎避免甚至杜绝的。一般情况下，引物都有留样备份，接到用户投诉后，我们都会找出留样重新定量，一般都没有问题，如确实存在问题，则可安排重新准备一份。

（2）系统误差，我们认为10%左右为允许误差。使用过程中，引物工作浓度范围很宽，定量上的少许偏差不影响实验。

（3）用户收到引物干粉时，打开引物管盖前没有离心或其他误操作导致引物干粉部分丢失。

（4）用户没有能够正确理解引物OD数的含义，没有能够正确使用分光光度计，特别是使用微量测定；用户没有将OD读数，正确地转换成母液中OD数。这种情况比较常见。

   例如，验证标2OD引物量是否准确，简单的做法是： 加入1ml水，彻底溶解混匀后，取100ul, 加入900ul水，用光径为1cm的石英比色杯，波长260nm, 此时光吸收的读数为0.2。

12.最长可以合成多长的引物？

答：我们合成过120base的引物，但是产率很低。除非需要，建议合成片段长度不要超过80base。引物越长，出现问题的概率就越大，按照目前的引物合成效率，大于80base的粗产品，全长引物的百分比不高，后续处理还有丢失很多，最后的产量是很低。

13.为什么修饰引物的产量要比一般引物低，价格要高?

答：主要因为是修饰单体稳定性较差，偶连时间长，效率低，最后得到的产量自然低于一般的引物。修饰引物通常需要PAGE或HPLC纯化，纯化过程损失大。修饰引物使用的原料是一般引物原料的几百倍，所以产品的价格也高。

14.引物片段退火后不能连接到载体上是什么问题？

答：连接反应需要引物的5’磷酸基团。如果需要将合成的引物退火直接连接相应的载体上，引物需要磷酸化。磷酸化的产物如果还不能连接载体上，需要检查载体的酶切效果，需要改善引物退火的条件。SiRNA分子具有特殊的对称结构，退火的难度较大，退火时需要提高退火温度。

15.如果测序发现引物突变，是否有补偿？该如何处理？

答：如果出现测序发现引物位置碱基错误的情况，我们可以免费重合一次，没有其他任何补偿或赔偿，不承担其他连带责任，这是国际行规。原因我们在前面已提到，化学合成效率不可能达到100%。

如果遇到这种情况，首先和我们联系，我们会检查合成序列是否和原始订单一致，如果确认引物合成序列没有输错，我们建议重新挑取克隆测序，您可能会找到正确克隆的。根据我们经验，40个碱基以下的引物，测1-2个克隆就可以了；40个以上的特别是用于全片段拼接合成的，就需要多测一些了。一般情况下，每个克隆突变的位点都不一样，正确的总是有的，就是如何找到它。您也可以要求我们将引物免费重合一次，不过重合的引物和**次的引物一样，都可能含突变，不会因为重合的引物就减少您的遇到问题的几率。基因拼接过程中，如果发现一段区域突变点不多，就多测几个，否则就重合一下引物。

16.引物是经过PAGE纯化的，为什么还有碱基缺失或插入？

答：理论上分析型PAGE变性电泳，可以区分引物之间一个碱基的差别。但是如果客户对长引物的量要求比较高，为保证引物的量，制备PAGE电泳，上样量都是非常大，电泳时的条带非常宽，带与带之间有重叠，分辨率已下降，电泳后割带回收目的引物时，很难说不割到差别仅几个碱基的引物。建议：减少OD数，引物遇到的问题可能就会少一些。

17.为什么引物的OD₂₆₀/OD₂₈₀小于1.5 ？

答： 需要指出的是OD₂₆₀/OD₂₈₀的比值不能用来衡量引物的纯度。OD₂₆₀/OD₂₈₀的比值过低一般是由于引物中C/T 的含量比较高所致。下表是一个20base 同聚体引物的OD₂₆₀/OD₂₈₀的比值，清楚表明OD₂₆₀/OD₂₈₀的比值与引物的碱基组成密切相关。

18.同样的OD用PAGE检测，EB染色为什么深浅不一？

答：通常可以用EB染色的方法来判断双链DNA的量(如质粒DNA)，因为EB可以嵌合到双链DNA中。而合成的单链DNA，由于碱基组成不同，形成二级结构的可能性不同，EB的染色程度也会有差异，比如Oligo(dT)等不形成二级结构，EB染色效果就非常差。所以不要用EB染色的方法来定量，而用紫外分光光度计检测。

19.如何检测引物的纯度？

答：实验室方便的做法是用PAGE方法。使用加有7M尿素的16%的聚丙烯酰胺凝胶进行电泳。取0.2-0.5OD的引物，用尿素饱和液溶解或引物溶液中加入尿素干粉直到饱和，上样前加热变性(95℃，2mins)。加入尿素的目的一是变性，二是增加样品比重，容易加样。600V电压进行电泳，一定时间后(约2-3小时)，剥胶，用荧光TLC板在紫外灯下检测带型，在主带之下没有杂带，说明纯度是好的。如果条件许可，也可以用银染方式染色。

21.已经溶解的引物，为什么原先使用正常，而过一段时间再使用就不好了？

答：如果您溶解引物的水pH过低或污染了菌或核酸酶，会使引物降解。使用时没有充分解冻混合，液体不均匀也可能会造成引物加入量不准确。建议分装引物，避免反复冻溶。建议使用10mM Tris pH7.5缓冲液溶解引物，因为有些蒸馏水的pH值比较低（pH4-5）, 引物在这种条件下不稳定。还有一种可能性是引物没有问题，而是PCR使用材料特别是模板的质量与先前使用的不完全一致。

22.引物是我们设计的，现在您扩不出来，我们要负责吗？

答：不承担相关责任。我们为一些实验经验不足的客户，免费设计引物，提供一定的便利。我们遵循一般的引物设计原则设计好引物之后都会发给您确认，而后再安排合成并保证引物质量。但是设计的引物是否能够满足您的实验要求，一定扩增出您需要的基因片段，谁也不能100%保证。

23.PCR扩增无目的片段是引物质量有问题吗？

答：PCR扩增无目的条带或者非特异性扩增，影响因素是多方面的，需要耐心地分析，如模板结构与质量、反应条件、引物设计等等。当今发展出各色各样的PCR扩增技术，各色各样的高温聚合酶，就是来解决PCR扩增中遇到的扩不出，扩增效率低的问题。如巢式PCR就是扩增拷贝数很低的基因片段。通过提高模板质量、优化反应条件等方面找到对策，或者有必要时重新设计引物，**在实验时设置对照来判定原因。如果您怀疑引物的问题，请您首先测定您溶解的引物的OD值，看实验时加入的引物量是否正确。如果量是正常的，请您告诉我司您的引物编号，我们会复查留存样品。如不明原因，我们免费为您重新合成一次。如果仍然不能扩增，请您查找其它原因。多数情况下我们复检引物质量都没有问题，因为我们在引物出售前已经严格把好质量关。

24. 常用荧光染料参数

注：关于猝灭基团的选择，一般是报告基团的发射光在猝灭基团的吸收波长内。